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病毒RNA提取純化試劑是于血清(血漿)等液體樣品中提取病毒 RNA 的純化試劑。本產品回 收率*,尤其適合于整合到臨床 RT-PCR 檢測試劑盒中。且能用于提取其他液體樣 品和微量樣品。
1. 適用于血清、血漿、尿液、腦脊液、唾液、眼淚等液體樣品。
2. 回收率達到 90%以上，高于絕大部分基于離心柱的提取方法。
3. 靈敏度高，RT-PCR 檢測到的終靈敏度可以達到 50-100 拷貝/mL(對 HIV 和 HCV)。
4. 一管式操作，不使用離心柱，整個操作過程均在室溫下完成。
5. 無毒環保。
6. 可放量，如果加上病毒離心富集步驟，每管多可以處理 1.5 mL 液體樣品。
常溫運輸，4℃保存，有效期一年。
1. 如果有 N 個樣品，標記 N+2 個 1.5-2 mL 螺旋蓋塑料離心管(如 Sarstedt CAT#:782.694.006)，多出的一個為陽性對照，一個為陰性對照。為避免污染， 建議不要使用壓蓋式塑料離心管。在每個管上做個標記，以在后續操作時區別向 心面和離心面。
2. 在離心管中分別加入 0.2 mL 液體樣品（血清、血漿、尿液、腦脊液、唾液、眼 淚等等），陽性對照和陰性對照。
1.1、 如果是口腔拭子、咽喉拭子等各種拭子樣品，則將拭子放入 0.2mL 自 備生理鹽水中擠壓出液體，然后取 0.2mL 進行提取。
1.2、 如果是糞便等半固定樣品，則取約 0.3mL 的樣品，加入 0,3 自備生理 鹽水，震蕩重懸，離心取 0.2mL 上清進行提取。
1.3、 如果血液，細胞培養液等含細胞的液體，可以離心用上清，也可以直接 取用，但后者提取的 RNA 中有細胞的基因組 DNA 污染。血漿的抗凝劑 必須是 EDTA 或 ACD，不能是肝素。使用 ACD 時由于所加入 ACD 會 增加體積，樣品會被稀釋，得到的病毒滴度會比使用 EDTA 低 15%左 右。血漿按 0.6mL/管的量分裝保存，以避免反復凍融。
1.4、 如果樣品是實體組織或培養細胞，則需要在自備生理鹽水中勻漿后離心，用 0.2mL 上清液（含病毒）進行提取，但此種情況下后得到的 RNA 不可避免的會含有基因組 DNA 污染。
1.5、 如果液體樣品中的病毒需要富集，可以使用 1.5 mL 上述方法得到的液體在 4℃ 24,000 g 冷凍離心 60 分鐘, 移棄 1.3 mL、用剩下的 0.2mL 繼續操作。
3. 在每個離心管中加入 0.6 mL RNA 病毒裂解液。RNA 病毒裂解液在低溫放置會 產生結晶沉淀，需提前 65℃水浴溶解并充分搖勻后取用。
4. 室溫放置 10 分鐘裂解病毒。
5. 振蕩數秒后加入 0.7 mL 室溫異丙醇，旋緊蓋后振蕩 30 秒混勻，把離心管的向 心面對向轉頭的中央，13,000-15,000 g 室溫離心至少 15 分鐘。
6. 小心移棄上清，注意不要觸及管底和管壁離心面的 RNA 沉淀（此時可能看不見）。
7. 加入 1.0 mL 室溫 70%乙醇, 振蕩數秒后 15,000 g 室溫離心 5 分鐘。注意： 在離心機中放置離心管時將其向心面對向轉頭的中央。
8. 小心移棄上清，注意不要觸及管底和管壁離心面的 RNA 沉淀（此時呈膜狀沉淀）。
9. 再短暫離心數秒, 用移液器移棄殘留液體（70%乙醇），否則它會影響后續反應。
10. 加入 200 μl RNase-free 水或1×液相 RNase Erasol(能滅活殘留 的 RNase, 而 RNase-free 水無此功能)，用移液槍仔細吹打離心管管底和管壁 離心面的膜狀 RNA 沉淀，溶液將呈混濁狀,含少量不溶物。由于不溶沉淀物中含 有 RNA，所以不要離心后取上清使用，必須取混合液使用，哪怕很渾濁。
11. 直接取適量用于 RT-PCR，如果溶于200 uL水,同時樣品使用量不超過 RT-PCR 體系的 1/2，不溶物一般不會影響 RT-PCR。剩余樣品可以室溫放置 2 小時， 也可保存于-80℃保存一個月。
病毒RNA提取純化試劑
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